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10 mM ATP 溶液配制指南(20 mL)
发布时间:2026-07-16 点击数:0

10 mM ATP 溶液配制指南(20 mL)

概述

ATP(三磷酸腺苷,Adenosine Triphosphate)是生物体内能量转移的核心分子,在分子生物学实验中广泛用作激酶反应的磷酸基团供体、体外转录的NTP底物以及荧光素酶报告基因检测的发光底物。本品为20 mL规格的10 mM ATP储备液,使用Tris-HCl缓冲液配制,-20 ℃分装避光保存。

ATP的分子特性

  • 分子中含有三个磷酸基团(α、β、γ),高能磷酸键储存大量化学能

  • 光、热和反复冻融敏感,易降解为ADP或AMP

  • 中性至弱碱性pH(7.5~8.0) 条件下最稳定

正确的配制、分装和避光保存是保证ATP溶液活性和实验重复性的关键。ATP对光敏感,配制和保存全过程须严格避光。

ATP降解途径与防护策略

降解因素机制防护策略
光照光分解,ATP → ADP + Pi棕色管/铝箔避光
反复冻融冰晶破坏分子结构,加速水解小份分装,单次使用
高温热加速水解-20 ℃保存
pH偏酸/偏碱磷酸酯键水解加速pH 7.5~8.0保存
金属离子催化水解反应使用超纯水,避免金属污染

所需材料

材料规格用量
Na₂ATP·3H₂O分子生物学级(≥99%)121 mg
Tris-HCl(pH 8.0)25 mM,无菌定容至20 mL
50 mL塑料离心管无菌,棕色或透明带铝箔1支
小离心管无菌,棕色或包裹铝箔若干(分装用)

详细操作流程

第一步:称量
称取121 mg Na₂ATP·3H₂O,转移至50 mL塑料离心管中。

第二步:溶解
加入约15 mL 25 mM Tris-HCl(pH 8.0) ,盖紧管盖,温和颠倒或涡旋至完全溶解(ATP溶解较快,溶液应无色透明)。

第三步:定容
25 mM Tris-HCl(pH 8.0) 定容至20 mL,充分混匀。

第四步:分装(避光操作)
避光条件下(如关闭照明灯或使用铝箔遮盖),将ATP溶液按单次实验用量分装至小离心管中(推荐50~100 μL/份或根据实验需求调整)。每管尽量填充至接近满管(减少顶部空气,降低氧化风险)。

第五步:避光保存

  • 若使用棕色离心管分装,直接标注后-20 ℃保存

  • 若使用普通透明离心管,用铝箔纸严密包裹后-20 ℃保存

第六步:标记
每管标注“10 mM ATP,避免反复冻融”及配制日期。

常见问题与解决方案

问题原因解决方法
ATP溶解缓慢温度过低或搅拌不充分室温温和搅拌,不可加热(热加速降解)
配制后溶液有颗粒未完全溶解或杂质充分搅拌至完全溶解;若有杂质需过滤(但过滤可能吸附ATP)
保存后降解(HPLC检测ADP峰)反复冻融或光照小份分装,避光保存,避免反复冻融
实验活性低(如激酶反应失败)ATP已降解为ADP/AMP使用新鲜分装ATP;用HPLC或酶学方法验证活性
溶液颜色变黄ATP降解或杂质氧化废弃重配,检查原料质量和保存条件

关键操作要点

  1. 避光是核心要求:ATP对光敏感,棕色管或铝箔包裹是必须的。操作过程中也尽量避光(如关闭超净台照明灯或快速操作)。

  2. 分装策略决定保质期:ATP在反复冻融过程中水解加速,小份分装(单次用量)、取用即弃是延长保质期的核心策略。

  3. 不可加热灭菌:ATP受热水解,严禁高压灭菌或加热溶解。所用溶剂应预先无菌处理。

  4. 选择合适溶剂:推荐25 mM Tris-HCl(pH 8.0) ,此pH条件下ATP稳定性最佳。若无现成缓冲液,也可用去离子水配制(pH约7.0),但稳定性略差。

  5. 缓冲液无菌要求:配制所用Tris-HCl缓冲液应预先高压灭菌0.22 μm过滤,确保无菌。

  6. 有效期管理:-20 ℃避光分装保存,有效期约6~12个月。若发现溶液颜色变黄或实验活性显著下降,应废弃重配。

  7. ATP原料的确认:市售ATP有游离酸(ATP·H₂)、钠盐(Na₂ATP)等多种形式,本配方针对Na₂ATP·3H₂O(分子量605.2)。若使用其他形式(如Na₂ATP·2H₂O),需按分子量调整称样量。

应用场景

应用使用方式
体外转录(IVT)作为NTP底物之一,终浓度1~10 mM
激酶活性检测作为磷酸基团供体,终浓度0.1~1 mM
荧光素酶报告基因检测荧光素酶底物,终浓度0.1~1 mM
T4 DNA连接酶反应提供能量,终浓度0.5~1 mM
蛋白磷酸化实验体外磷酸化反应底物


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